Beszámoló a "Nők a tudományban" konferenciáról

Kedves Olvasók!

Szeretnék egy rövid beszámolót közzétenni az SZTE Szegedi Tehetségpont által megrendezett "Nők a tudományban" elnevezésű konferenciáról, amelyen 2014. november 6.-án vettem részt.

A rendezvény a szegedi Szent-Györgyi Albert Agóra kamaratermében került megrendezésre. A konferenciát Prof. Dr. Karsai Krisztina, a Szegedi Tudományegyetem oktatási rektorhelyettese nyitotta meg. Nyitóbeszéde rendkívül érdekes és inspiráló volt. A rektorhelyettes asszony szerint a lányok is nyugodtan vértezzék fel magukat a kíváncsiság fegyverével, választhatják a tudós életpályát, mert segítőik mindig lesznek az úton. Sokszor megkapják a gyengébbik nem képviselői, hogy nem kell atomfizikával vagy molekuláris biológiával foglalkozniuk, mert az nem szokás. Továbbá arra is bátorítja a hölgyeket, hogy ne vegyék komolyan azokat, akik le akarják beszélni őket a kutatói pályáról. 

Az első előadó Dr. Széll Márta, az MTA doktora, az SZTE ÁOK dékánhelyettese, az Orvosi Genetikai Intézet vezetője volt. Előadása a "Hogyan egyeztethető össze a biológia csodáinak kutatása és a gyermeknevelés - tanulságok és tanácsok" címet viselte. Nagyon élvezetes előadást hallhattunk, mely rengeteg személyes tapasztalatot tartalmazott. Nagyon motiváló volt hallgatni egy sikeres kutatónő pályájának alakulását. Hasznos tapasztalatokat, tanácsokat hallhattunk, hogy hogyan lehetséges párhuzamosan megvalósítani a karierrel kapcsotalos álmainkat és az anyaságot. Bevallom őszintén, a dékánasszony előadása egy kissé megnyugtatott.

A továbbiakban a 2013-as év Arany Fokozatú Kiválósági Listás Ösztöndíjasai mutatkoztak be. Elsőként Csendes Zita, az Év Tehetsége Ösztöndíjas (2013), a Kémia Doktori Iskola hallgatója előadását hallhattuk már a doktori disszertációját is megvédte és boldog édesanya. Zitát még a gólyatáborból ismerem és nagyon kíváncsi voltam a szakmai előmenetelére. Többek közt ezért is vettem részt ezen a konferencián. Nagyon meglepődtem, hogy mennyi mindent sikerülhet megvalósítani a doktorandusz hallgatóként eltöltött években (külföldi tanulmányút, gyermek).

Másodikként Hevesi Andrea, Arany fokozatú Kiválósági Listás Ösztöndíjas (2013), az Irodalomtudományi Doktori Iskola hallgatója előadása került sorra. Andrea nem a szokványos power point prezentációval készült, ami egy kicsit meglepett először. A kutatásaival kapcsolatos száraz tények helyett, egy színes előadást hallottunk a konferencia témájával kapcsolatban.

Egy rövid szünetet követően "Női szerepek az újkori Itália társadalmában: uralkodók, költők, apácák és kurtizánok" címmel tartott előadást Dr. Vígh Éva, az MTA doktora, az SZTE BTK Olasz Nyelvi és Irodalmi Tanszék egyetemi tanára.

Dr. Mastalir Ágnes, az MTA doktora, az SZTE TTIK Szerves Kémia Tanszék egyetemi docense szintén személyesebb hangvételű előadást tartott "Kísérletek és eredmények: egy női kutató tudományos próbálkozásai" címmel. Beszámolt külföldi tartózkodásai mellett arról is, hogy szerinte a női kutatók hogyan találhatják meg az egyensúlyt a tudományos karrier illetve a család között. 

Bencsik Orsolya, az Év Tehetsége Ösztöndíjas (2014), az Irodalomtudományi Doktori Iskola hallgatója és Martyin Zita, Arany fokozatú Kiválósági Listás Ösztöndíjas (2014), a Földtudományi Doktori Iskola hallgatója is beszámolt kutatói munkájáról az érdeklődőknek.

A vállalati szférából is érkeztek előadók, akik lehetséges női életpálya-modelleket mutattak be és számos hasznos gyakorlati tanáccsal láttak el minket.  Az E.ON Hungária Zrt. munkatársa, Puszta Izabella arra mutatott rá, hogy jó, ha minden nő meg tudja fogalmazni, mi teszi boldoggá, és mit tesz azért, hogy a kitűzött céljait elérje. Gondolok itt arra, hogy szülés után hogyan készítsük fel magunkat a munkahelyünkre történő visszatérésre például. Varga Petra a Printker Zrt. és a Fiatal Vállalkozók Országos Szövetsége képviseletében azt emelte ki, hogy hitelesnek kell lennünk, ne játssza meg magát senki, még akkor se, ha esetleg ezt várják el tőle. Úgy véli, a nők előnye a férfiakkal szemben, hogy nagyon érzékenyek és egyszerre többfelé is tudnak figyelni. 

Összességében tehát nagyon érdekesnek és mindenek előtt hasznosnak találtam ezt a konferenciát. Remélem még a jövőben is részt vehetek hasonló témában rendezett eseményen.

   

Év végi összegzés

Kedves Olvasók!

Az év utolsó napjának utolsó órájában arra gondoltam, hogy egy rövid összegzést írok a 2014-es év kutatási eredményeiről. Egészen pontosan az Apáczai Csere János Doktoranduszi Ösztöndíj pályázati időszakán belül született konferencia részvételeket és publikációkat sorolnám fel.

Konferenciák:

2014.05.19-20. között megrendezésre került Szegedi Biológus Doktorandusz Konferencia. Előadásom címe Aspergillus fajok előfordulása és jelentősége a mezőgazdaságban és a klinikumban volt. Az előadás angol nyelvű absztraktja az Acta Biologica Szegediensis folyóiratban kerül megjelenésre Occurrence and importance of Aspergilli in agricultural products and clinical sources címmel.

Baranyi N., Kocsubé S., Varga J., and Vágvölgyi Cs. (2014) Molecular identification of Aspergilli from environmental sources from India. 16th Danube-Kris-Mures-Tisa (DKMT) Euroregion Conference on Environment and Health. 25-26. 04. 2014. Arad, Romania. p. 30. (poszter)

Baranyi N., Kocsubé S., Raghavan A. (2014) Aspergillus lentulus and Aspergillus neoniger as causal agents of mycotic keratitis in South India: molecular identification and antifungal susceptibilities. 62nd annual conference of The Tamil Nadu Ophthalmic Association. Darshan 2014. http://www.tnoaabstracts.com/ViewFreePaperByNo.aspx?id=385

(E-poszter)

Baranyi N., Kocsubé S., Manikandan P, Šegvić Klarić M., Jakšić Despot D., Vágvölgyi Cs. and Varga J. (2014) Complex genetic variability testing of Aspergillus flavus isolates from four various habitats. Magyar Mikrobiológiai Társaság 2014. évi Nagygyűlése és EU FP7 PROMISE Regional Meeting. 2014. október 15-17. Keszthely, Magyarország. Absztraktfüzet. p.6. (poszter)

Cikk

A publikáció az Acta Biologica Szegediensis folyóiratban jelent meg: Volume 57(2):95-107, 2013. Címe: Current trens in aflatoxin research. Szerzői: Nikolett Baranyi, Sándor Kocsubé, Csaba Vágvölgyi, János Varga. A folyóirat online elérhetősége: http://www.sci.u-szeged.hu/ABS. ISSN 0563-0592 (Acta Universitatis Szegediensis) ISSN 1588-385X (print form) ISSN 1588-4082 (online form)

A publikáció az Acta Biologica Szegediensis folyóiratban jelent meg: Volume 58(2):167-170, 2014. Címe: Identification of potential mycotoxin producing fungi on agricultural products in Hungary and Serbia. Szerzői: Nikolett Baranyi, Sándor Kocsubé, Noémi Kiss, Andrea Palágyi, Mónika Varga, Beáta Tóth, János Varga. A folyóirat online elérhetősége: http://www.sci.u-szeged.hu/ABS. ISSN 0563-0592 (Acta Universitatis Szegediensis) ISSN 1588-385X (print form) ISSN 1588-4082 (online form).



Az Apáczai Csere János Doktorandusz Ösztöndíj a konvergencia régiókban pályázat keretein belül végezhettem ebben az évben a kutatási munkám.

Végezetül: 

Boldog Új Évet Kívánok Mindenkinek!

Mikózisok kezelésére használt szerek, rezisztencia mechanizmusok, tesztek

Kedves Olvasók!

Ebben a bejegyzésemben a fonalas gombák által okozott betegségek során alkalmazott gombaellenes szerekről, azok hatásmechanizmusáról, a különböző szerekkel szembeni rezisztenciával és a gombaellenes szerekkel szembeni érzékenység vizsgálatára használt tesztekről írok.

Először is szeretnék néhány nagyon hasznos cikket bemutatni. A doktori szigorlatomra készülve akadtam ezekre és illenek is a mostani témához:

• Pasqualotto AC. 2009. Differences in pathogenicity and clinical syndromes due to Aspergillus fumigatus and Aspergillus flavus. Med Mycol 47:261-270.
• Dimitrios P Kontoyiannis, Russell E Lewis. 2002. Antifungal drug resistance of pathogenic fungi. The Lancet 359:1135-1144.
• G. Chamilos, D.P. Kontoyiannis. 2005. Update on antifungal drug resistance mechanisms of Aspergillus fumigatus. Drug Resistance Updates 8:344–358.

A gombák okozta infekciók kezelésére számos antifungiális szer áll rendelkezésre. Leggyakrabban alkalmazottak a poliének (amfotericin B, nystatin), az azolok (fluconazol, itraconazol, ketoconazol, voriconazol), és az echinokandinok (mikafungin, anidulafungin, caspofungin).

1. Poliének
Interakció az ergoszterollal 
A target struktúra a plazma membránban található ergoszterol. A kötődés következtében csatornák jönnek létre a citoplazma membránban, ami növeli a membrán permeabilitását. A csatornákon keresztül megnő a Na+ ionok kiáramlása, ami a protongrádiens végzetes változását követően sejthalált idéz elő.
Pl: amfotericin B (és lipid formulái), nystatin (és lipid formulái)

2. Azolok
Ergoszterol bioszintézis gátlók
Gátolják a citokróm P450 14α demetilázt (lanoszterol 14α demetiláz), ami az ergoszterin bioszintézis egyik utolsó lépését katalizálja. A lanoszterol felhalmozódása zavart okoz a gomba sejtmembrán felépítésében. Fungisztatikus hatásúak.
Pl: ketoconazol, fluconazol, itraconazol, voriconazol, miconazol, posaconazol, ravuconazol, isavuconazol

3. Echinokandinok
Glükán szintézis gátló vegyületek
A gombák sejtfala olyan összetevőket is tartalmaz, melyek nem találhatók meg máshol a természetben. Néhány ezek közül szelektív targetje lehet a gombaellenes szereknek anélkül, hogy károsítanák az emlős sejteket.
Az echinokandinok gátolják a gombákban a β1,3-glükán szintézisét (a β1,3-glükán szintáz komompetitív gátlása révén)
A gombasejt ozmotikus lízisét okozzák.
Pl: caspofungin, mikafungin, anidulafungin

4. Allilaminok
Szkvalén epoxidáz gátlása a gomba ergoszterol bioszintézise során
Ergoszterol hiányt és a toxikus szterolok felhalmozódását idézi elő. Fungisztatikus hatású. 
Pl: terbinafin

5. Fluoropirimidinek
Az 1960-as évektől alkalmazzák, főleg Candida fajok ellen hatásosak. Primer rezisztencia az Aspergillus fajokkal szemben.
Pl: 5-Fluorocitozin (5-FC)

Végezetül szeretném néhány csészefotón bemutatni a laboratóriumi munkám során végzett tesztek eredményét. (fent: korongdiffúziós teszt, lent: E-teszt)

A szemet érintő gombás fertőzések

Kedves Olvasók!

Úgy vélem, hogy az aflatoxinokkal kapcsolatban nagyon széles körű tájékoztatást írtam a korábbi bejegyzéseimben. Most egy kicsit a klinikai vonatkozásról írnék.

Napjainkban az Aspergillus fajok egyre gyakrabban okoznak opportunista mikózisokat immunszuppresszált betegekben. Ennek fő okai a modern immunoszupresszáns terápiák terjedése, és a szervátültetések növekvő száma évről-évre (Cohen és mtsi 1993). Az Aspergillus fajok által okozott humán betegségek három csoportba sorolhatók: allergiás aszpergillózis, aszpergillóma és invazív aszpergillózis (Hogan és mtsi 1996). A fertőzés leggyakrabban a légzőszervrendszerben jelentkezik, de szemfertőzést (keratitisz) és fülfertőzést (otitisz) is okozhatnak. Leggyakrabban az A. fumigatus okoz megbetegedést, de más Aspergillus fajok, mint például A. flavus, A. terreus, és az A. niger fajkomplex tagjai is jelentősek, mint opportunista humán patogének (Latge, 1999). Nagyon fontos a klinikai Aspergillus izolátumok fajszintű meghatározása, mert a különböző fajok eltérő mértékben érzékenyek gombaellenes szerekre. A faj ismerete segíthet a megfelelő gombaellenes terápia kiválasztásában (Balajee és mtsi 2005).

Különféle mikroorganizmusok által okozott fertőzések érinthetik a szem bármelyik részét, de leggyakoribb a szaruhártya megbetegedése (Srinivasan és mtsi 1991). Keratitisznek a szaruhártya gyulladásos megebetegedését nevezzük. Nem ritka, hogy a fertőzés a szaruhártyán kívül kiterjed a szemhéjra, kötőhártyára, ínhártyára, könnyszervekre, a szemgolyó belső struktúráira vagy a szemüregre. A szem belsejében kialakuló, fertőző ágens okozta, általában gennyes gyulladás az endoftalmitisz. A megbetegedést a legkülönbözőbb mikrobák válthatják ki. A vírusok és baktériumok mellett különösen a trópusi-szubtrópusi országokban a gombák igen jelentős kórokozói a keratitisznek. Leggyakrabban Candida, Fusarium és Aspergillus fajok mutathatók ki. Ha a kornea fertőzését gombák okozzák, akkor mikotikus keratitiszről, vagy keratomikózisról beszélünk. 

Az Aspergillus fajok a leggyakoribb előidézői a gombák által okozott keratitisznek szubtrópusi illetve trópusi területeken. A fertőzés fő kockázati tényezője a növényi részek által okozott trauma a mezőgazdasági munka során. Ezért egy évek óta fennálló kölcsönös együttműködésnek köszönhetően számos Aspergillus izolátumot kaptunk egy indiai szemklinikáról (Aravind Eye Hospital, Coimbatore, Tamil Nadu, India). A szemklinikán kizárólag morfológiai alapon történő fajmeghatározást végeznek, de pusztán morfológiai karakterek alapján csak néhány faj esetén lehetséges a pontos meghatározás. Molekuláris módszerekkel a fajok azonosítása biztosabb. Nagyon fontos a klinikai Aspergillus izolátumok fajszintű meghatározása, mert a különböző fajok eltérő mértékben lehetnek érzékenyek gombaellenes szerekre. A faj ismerete segíthet a megfelelő gombaellenes terápia kiválasztásában. Az Aspergillus fajok elkülönítésére különböző módszerek léteznek, a β-tubulin vagy kalmodulin gének szekvenciái megfelelőnek bizonyultak a fajszintű elkülönítéshez. Az Aspergillus fajok közül főként az A. flavus, A. terreus, A. fumigatus és A. niger okoz keratitiszt. 

Munkánk során 2012-ben 52 Dél-Indiából származó keratitiszes esetekből izolált törzset vizsgáltunk. Indiában előzetes morfológiai meghatározást végeztek, mely alapján az összes izolátumot az A. flavus fajba sorolták.  A molekuláris fajazonosítás eredményeként a legtöbb azonosított izolátum, 46 (88,5%) az A. flavus fajba, 4 (7,7%) az A. tamarii fajba, míg 1-1 izolátum (1,9-1,9%) az A. terreus és A. pseudotamarii fajba tartozik. Utóbbi aflatoxinogén fajt elsőként azonosítottuk emberi fertőzésből.

2014-ben az Indiában morfológiai alapon meghatározott 5 A. terreus, 5 A. fumigatus, 5 A. tamarii és 25 A. flavus és egy azonosítatlan Aspergillus izolátumot vizsgáltunk. A molekuláris fajazonosítást követően az alábbi fajeloszlást kaptuk: 4 A. terreus, 1 A. melleus, 5 A. fumigatus, 6 A. tamarii, 24 izolátum az A. flavus és 1 az A. quadrolineatus fajba tartozott. A fajazonosításhoz a szekvenciákat a Bioedit program segítségével elemeztük, a szekvenciák illesztéséhez a Mega6 programot használtuk.

A következő bejegyzésemben a lehetséges terápiáról, illetve az általunk végzett tesztekről fogok beszámolót írni.

Aflatoxin termelő képesség vizsgálata a laborban

Kedves olvasók! Sajnos a múlt hónapban elcsúsztam az augusztusi beszámolóval, ezért ebben a hónapban két bejegyzésem is született. Folytatva az eddigi vonalat most is aflatoxinokról fogok írni, viszont ebben a bejegyzésben bemutatom, hogy a vizsgálataimat hogyan is végzem el a laborban. Ezen kívül néhány érdekességet is bemutatnék, mellyel Indiában találkoztam.

Több különböző módszer kipróbálását követően a következőképpen történik az Aspergillus flavus izolátumok aflatoxin termelő képességének vizsgálata a csoportunkban. Először is egy indukáló tápoldatot készítünk, mely 2% élesztő kivonatot és 20% szacharózt tartalmaz. A szacharóz vagy étkezési cukor (nádcukor, répacukor, juharcukor) egy diszacharid, melyet egy glükóz és egy fruktóz molekularész alkot (C₁₂H₂₂O₁₁). A növények termelik és a heterotróf élőlények fontos tápláléka. Nagyon fontos még, hogy ne legyen csökkentett az élesztőkivonat sókoncentrációja.

Ezt követően a tápoldatot félkémcsövekbe mérjük, sterilizáljuk, majd a vizsgálni kívánt izolátumokat beleoltjuk. Az aflatoxin termelésnek kedvező feltétel a meleg, ezért 25 és 30 °C-on is vizsgáljuk az izolátumok aflatoxin termelő képességét. Az inkubáció 7-10 nap sötétben, ugyanis az aflatoxin fény hatására bomlik.

Ezután elvégezzük a toxin extrakciót. Mi általában diklór-metánt, vagy kloroformot használunk. Az extrakció során a toxin a vizes fázisból a szerves fázisba kerül. Centrifugálással a két fázis jól elkülöníthető. A szerves fázissal dolgozunk tovább. Mikrocentrifuga csövekbe mérjük a mintákat (általában 1-2 ml) és a szerves oldószer elpárologtatásával betöményítjük a mintákat.

Végül kis mennyiségű szerves oldószerben (kloroform ebben az esetben) újra felvesszük a mintát és vékonyréteg kromatográfiával vizsgáljuk. A vizsgálathoz rendelkezésünkre áll egy készülék (Camag, Linomat5), mely nagyban megkönnyíti a minták rétegre történő felvitelét. 

A felvitelt a réteg futtatása követi. Több próbálkozás után a toluol:etil-acetát:hangyasav 6:3:1 arányú keverékét találtuk a leghatékonyabb futtatóelegynek. Ebben az esetben a különböző extrahált metabolitok jól elkülönültek egymástól és az alkalmazott aflatoxin standard segítségével könnyen azonosíthatóak a mintákban a különböző aflatoxin formák. Az UV-fény alatt mutatott kék illetve zöld fluoreszcenciájuk alapján, valamint az eltérő Rf (retenciós faktor) értékek alapján, megkülönböztetünk aflatoxin B₁, B₂, G₁ és G₂-t („B-blue”, „G-green”).

Fent látható néhány kép a futtatás menetéről, egy futtatókádról és egy rétegről, melyet a Camag honlapjáról töltöttem le, mivel én nem rendelkezem ilyen szép fotóval.

Végezetül néhány érdekesség:

Lehetőségem volt tavaly novemberben egy hónapot eltölteni Indiában, ahol bepillantást nyerhettem egy szemklinika mikrobiológiai laboratóriumának, valamint egy egyetemi mikrobiológiai laboratórium munkájába is. A kinti hallgatók is vizsgálták az Aspergillus flavus izolátumok aflatoxin termelő képességét egy egészen más módszerrel. Kókusztejből készítenek táptalajt, amelyre egy specifikus (AFPA) táptalajon előnevelt A. flavus izolátumokat oltanak. Ha az adott izolátum termel aflatoxint, akkor UV fény alatt látható egy fluorszcens anyag a táptalajban. Ezt a kísérletet itthon is elvégeztem, de nem bizonyult olyan hatékonynak, mint a vékonyréteg kromatográfia. Indiában azért használhatják, mivel nagyon könnyen hozzájutnak a friss kókuszhoz, ezáltal nagyon olcsó, valamint nem kell egyéb szerves oldószerekkel, illetve analitikai módszerekkel dolgozniuk. Íme néhány csészefotó a konzerv kókusztejből készült táptalajon végzett kísérletről.

Mikotoxinokról általában

Az előző bejegyzésekben már sokat írtam az aflatoxinokról, melyek az Aspergillus nemzetségbe tartozó fonalas gombák közül néhány képes előállítani. Viszont az aflatoxinokon kívül számos más jelentős mikotoxin létezik. Ebben a bejegyzésben a mikotoxin-termelésről, a mikotoxikológia létrejöttéről lesz szó.

A gombák különböző módon károsíthatják az embert illetve az állatokat: 

Okozhatnak különböző mikózisokat, mikotoxikózisokat, micetizmusokat.

lDefiníció: fonalasgombák általában másodlagos anyagcsere-termékei, melyek az embert és/vagy az állatokat valamilyen módon károsítják .

lJelentőség: az ember és háziállatai táplálékát, illetve környezetét szennyezhetik, különböző kórképeket válthatnak ki.

Itt tisztáznám a másodlagos metabolitok fogalmát is:

Nem elengedhetetlenül szükségesek a sejt életben maradásához, ellentétben az elsődleges anyagcseretermékekkel . Nem fordulnak elő minden élőlényben, csak néhány faj termel egy adott vegyületet. Általában kis méretűek és a sejt életének csak egy adott szakaszában termelődnek. Szerepük többnyire ismeretlen.

Ezzel szemben az elsődleges metabolitok: 

lA normális növekedéshez, reprodukcióhoz, fejlődéshez szükségesek, általában a log fázisban termelődnek . Szigorúan szabályozott termelődésük.Tudjuk, mi mire való.

A mikotoxinok több, különböző módon is bejuthatnak a szervezetbe.

lKözvetlen szennyezésként (szennyezett növény fogyasztása révén, pl. liszt)

lKözvetve (mikotoxinnal szennyezett takarmányt fogyasztó állatokból származó élelmiszerek révén; pl. sertés vese)

lÉlelmiszeriparban alkalmazott mikotoxin termelő gombák okozta szennyezés révén (pl. fermentált szalámi, szójaszósz)

lGombaspórák belégzése (ochratoxinok, makrociklikus trichotecének)

lGombafertőzés hatására a szervezetben is termelődhet (ochratoxinok, fumonizinek, gliotoxin, oxálsav)

Néhány mikotoxin hatásmódja látható ezen az ábrán.

Mikotoxikológia

A mikotoxinokkal foglalkozó tudományág az 1960-as években jött létre. Ekkor ugyanis egy rejtélyes betegség pusztított a pulykák körében Angliában, mely több mint 100.000 pulyka elhullását okozta. A vizsgálatok során májkárosodást mutattak ki az állatokban. A betegséggel a takarmányba kevert toxinnal szennyezett földimogyorót hozták összefüggésbe. A tápból egy fonalasgombát is izoláltak, melyet Aspergillus flavus-ként azonosítottak. A toxikus anyagot, utalva a termelő gombára, aflatoxinnak nevezték el. 

Végezetül egy képet választottam, amelyre összegyűjtöttem néhány olyan élelmiszert, melyek tartalmazhatnak mikotoxinokat. Tehát nem törvényszerű, de előfordulhat mikotoxin szennyezés számos fermentált-, húsipari-, tejipari élelmiszerben, importált termékekben, valamint hazai mezőgazdasági termékekben is.

Toxinmentesítési technikák

Amint azt az előző bejegyzésem végén megemlítettem, ma a toxinmentesítési technikákat szeretném bemutatni.

A mikotoxinok detoxifikálására, eliminálására fizikai, kémiai és biológiai módszerek is léteznek. 

a. Fizikai módszerek

• A legegyszerűbb módszer a hígítás, azaz a toxintartalmú takarmány toxinszegény, vagy toxinmentes takarmánnyal való összekeverése. Az EU szabályozása azonban ezt a megoldást tiltja.  DE: más országokban nem tilos (pl. Mexikó, Afrika, India, stb.
• Hőkezeléskor 150-200°C-os hőmérsékletnek teszik ki a kezelendő anyagot, ez egyes esetekben fumonizin B1 szennyezettség esetén alkalmazható. Viszont a legtöbb mikotoxin igen hőstabil, ezért ez az eljárás nem túl célravezető.
• Az átmosásos eljárás (vízzel vagy Na-karbonát oldattal) DON (deoxynivalenol), zearalenon,valamint fumonizin szennyezettség mértéke csökkenthető. 
• Bizonyos esetekben alkalmazható mikrohullámú kezelés (trichotecének) és gamma-sugárzás (ochratoxin) is.

b. Kémiai kezelés

• Erős alkalikus kezelés (probléma azonban a neutralizáció): aflatoxinnál bevált, a csökkenés mértéke akár 90 % is lehet, de más toxinoknál a hatás kérdéses (pl. T-2 stabil). Fumonizin esetében az alkalikus kezelést redukáló cukorral kombinálva N-(karboximetil)-fumonizin jön létre, amely lényegesen kevésbé toxikus vegyület és a fumonizin mennyisége akár 20 % alá csökkenthető. 
• Alkalikus nátrium-hipoklorit kezelés a T-2 toxin esetében hatásos, de neutralizációs problémák és a kezelésre alkalmazott készítmény korrozív jellege miatt nem elterjedt. 
• Nátrium-bikarbonát 0,2-0,3 % mennyiségben adagolva a takarmányhoz ochtratoxin esetében csökkenti a toxicitást. 
• Oxidatív kezelések: pl. hidrogén-peroxid: a zsírokat károsítja, hatása kérdéses. A neutralizációja nem megoldott. 
• Felületaktív anyagok: alkalmazásuk során tekintetbe kell venni, hogy a mikotoxinok mellett más, hasonló karakterű vegyületeket is megkötnek - pl. vitaminok, peptidek, aminosavak, továbbá a mikotoxinok kémiai karaktere igen eltérő, és a takarmányokban általában nem egyféle mikotoxin van jelen, így megkötésükre sokszor nem elegendő egyetlen ún. toxinkötő vegyület!) 
• pl. kaolin → drága és csak az aflatoxin esetében bizonyult hatásosnak, 
• pl. rostkiegészítés → a hatása kérdéses és egyéb kedvezőtlen hatás is lehet (a trichotecén vázas toxinok a búzakorpában akkumulálódnak), 
• pl. bentonit → az alapanyag sokszor nehézfémekkel szennyezett, 
• pl. aktív szén (carbo medicinalis) → nem gyakorlatias - igen nagy mennyiség (5-10 %) szükséges, 
• pl. montmorrilonit (acidikus) → megköti a zearalenont, 
• pl. aluminium szilikátok → köti a poláros mikotoxinokat – pl. aflatoxinokat (sajnos egyéb anyagokat fémek, vitaminok is ), 
• pl. szerves aluminium szilikát komplexek → kötik az apoláros mikotoxinokat, zearalenont, ochratoxint. 
• Specifikus kötőanyagok: a legfontosabb feltétel a toxinkötő anyagokkal szemben, hogy a bélcsatornában lévő enzimeknek – mind az állat saját enzimjei, mind a bélcsatornában lévő mikro-organizmusok által termelt enzimek - ellenálló legyen.  Egyes szénhidrátok, így pl. a mannán oligoszacharidok (élesztő sejtfal kivonatok) toxinkötése a bélcsatornában feltehető, de hatásuk zömében csak in vitro bizonyított és drágák. Pozitív hatásuk, hogy a szervezet és a baktériumok által termelt enzimeknek rendkívüli mértékben ellenállóak. Alkalmasak mind a poláris, mind az apoláris mikotoxinok megkötésére (de nem azonos mértékben).  Cholestyramine, hatásos anion cserélő gyanta, korábban az epesavak megkötésére használták, a zearalenont és a T-2 toxint is hatékonyan köti, de drága. (forrás: Búza László és mtsi. 2008, Lovak takarmányozási eredetű idegrendszeri megbetegedései. Mezőgazdasági Szakigazgatási Hivatal Központ Élelmiszer- és Takarmánybiztonsági Igazgatóság kiadványa)
• Aflatoxinnal szennyezett takarmány detoxifikálását ammonizálással alkalmazzák az USA-ban, Franciaországban, Nagy-Britanniában és Afrikában. VISZONT: Az Európai Közösségben az emberi fogyasztásra szánt árucikkek kémiai kezelése nem megengedett. 

c. Biológiai módszerek

• Ennek során a mikotoxinok lebomlanak vagy átalakulnak egy nem- vagy kevésbé toxikus metabolittá 
• Az aktív ágensek lehetnek (aflatoxin degradáció esetén):  
• baktériumok (Flavobacterium aurantiacum, Nocardia asteroides, Corynebacterium rubrum, Mycobacterium fluoranthenivorans, Rhodococcus erythropolis) 
• gombák (Aspergillus parasiticus )
• enzimek (lakkáz, aflatoxin-detoxifizyme) 

A mezőgazdasági termékek mikotoxinokkal való szennyeződése igen komoly problémát jelent. Ezzel kapcsolatban számos fórumon találunk bejegyzéseket.

Illetve találtam néhány terméket, amelyet sikeresen alkalmaztak takarmányok aflatoxin-mentesítésére. 

http://www.biomin.net/hu/termekek/mycotoxin-kockazatkezeles/mycofixr/

http://www.anitech.hu/takarmanyozas/120-szarvasmarha-takarmanyok-toxin-szennyezettsegenek-csokkentese

A mai bejegyzésemet egy nagyon vicces képpel zárnám. 1 hónap múlva újra jelentkezem.